Record Details

Regeneration of Cartilaginous Tissue After Transplantation of Allofibroblasts

General Reanimatology

View Archive Info
 
 
Field Value
 
Title Regeneration of Cartilaginous Tissue After Transplantation of Allofibroblasts
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ИЗУЧЕНИЕ ПРОЦЕССА РЕГЕНЕРАЦИИ ХРЯЩЕВОЙ ТКАНИ ПОСЛЕ ТРАНСПЛАНТАЦИИ АЛЛОФИБРОБЛАСТОВ
 
Creator A. Tilyakov B.; Republican Research Centre of Emergency Medicine
B. Magrupov A.; Republican Research Centre of Emergency Medicine
M. Urazmetova D.; Republican Research Centre of Emergency Medicine
B. Karimov R.; Republican Research Centre of Emergency Medicine
B. Ubaydullaev S.; Republican Research Centre of Emergency Medicine
V. Sharipova Kh.; Republican Research Centre of Emergency Medicine
А. Тиляков Б.; Республиканский научный центр экстренной медицинской помощи
Б. Магрупов А.; Республиканский научный центр экстренной медицинской помощи
М. Уразметова Д.; Республиканский научный центр экстренной медицинской помощи
Б. Каримов Р.; Республиканский научный центр экстренной медицинской помощи
Б. Убайдуллаев С.; Республиканский научный центр экстренной медицинской помощи
В. Шарипова Х.; Республиканский научный центр экстренной медицинской помощи
 
Subject embryonic allofibroblasts; cartilaginous tissue regeneration
эмбриональные аллофибробласты; регенерация хрящевой ткани
 
Description Aim of investigation. To prove the usefulness of the use of embryonic fibroblasts for the regeneration of cartilaginous tissue.Material and methods. New experimental model of symphysis pubis rupture followed by its recovery was employed in 24 male Shinshilla rabbits (2.3—3.5 kg body mass) in 3 series of experiments. In the first series, reconstruction was not employed. In the 2nd series, the reconstruction of symphisis was performed with the aid of tantal wired cerclage (d=1.2 mm). In the 3d series, the reconstitution was the same as in the previous series of experiments with addition of grown embrional allofibroblast tissue pieces. Duration of experiments was 7, 14, 21and 30 days. After each experiment, pieces of cartilaginous tissue were fixed with 10% neutral formalin and embedded in paraffin. Histological sections were stained with hematoxylin, eosin and VanGieson. Results. After the rupture of symphysis pubis of the pelvic bone, the cartilaginous tissue undergone alterations followed by formation of chondromatous nodules of different sizes and sclerosis of surrounding muscular and osseous tissues. In the second series of experiment after pelvis symphysis pubis rupture and symphysis recovery with the help of cerclage, the morphologic investigation revealed the formation of mixed initial callus consisting of connective and chondromatous tissue elements. In the third series of experiment it has been shown that within 4 weeks of experiment, the connective tissue with intensive basophil stain is formed in the area of symphysis pubisrupture. Connective tissue formation in surrounding soft tissue structures was associated with the formation of cartilaginous cells.Conclusion. Process of formation of cartilaginous tissue in the area of symphysis pubis rupture as evident by the experimental observation demonstrates the stimulating influence of allogeneic fibroblasts on process of cartilaginous tissue regeneration that ensures premises for clinical development of suggested method of regeneration.
Цель исследования. Обоснование применения эмбриональных аллофибробластов в процессе регенерации хрящевой ткани.Материал и методы. У 24 половозрелых самцов кроликов породы «Шиншилла» массой 2,3—3,5 кг использовали новую экспериментальную модель разрыва лонного сочленения костей таза с последующим его восстановлением в 3х сериях экспериментов. В 1й серии — после разрушения лонного сочленения реконструктивновосстановительные операции не выполнялись. Во 2й серии восстановление симфиза выполняли при помощи серкляжа из танталовой проволоки диаметром 1,2 мм. В 3й серии — восстановление симфиза выполняли также как во 2й серии, кроме того, в зону повреждения симфиза вводили раствор с выращенными эмбриональными аллофибробластами. Кусочки хрящевой ткани фиксировали в 10процентном нейтральном формалине и заливали в парафин. Гистологические срезы окрашивали гематоксилином, эозином и по ВанГизону. Продолжительность экспериментов — 7, 14, 21 и 30 дней.Результаты. После разрыва лонного сочленения костей таза хрящевая ткань подвергается альтеративным изменениям с последующим образованием разновеликих дольчатых хондроматозных узелков и склероза окружающих мышечной и костной тканей. Результаты морфологического исследования во 2й серии экспериментов свидетельствуют о формировании смешанной первичной мозоли, состоящей из соединительнотканных и хондроматозных тканевых элементов. 3я серия эксперимента показала, что в зоне повреждения лонного сочленения в течение 4х недель формируется соединительная ткань, имеющая интенсивную базофильную окраску. В окружающих мягкотканых структурах также отмечалось образование соединительной ткани с последующим формированием хрящевых клеток.Заключение. Процесс формирования хрящевой ткани в зоне разрыва лонного сочленения свидетельствует о стимулирующем влиянии аллогенных фибробластов на процесс регенерации хрящевой ткани в эксперименте, что создает предпосылки для применения данного метода в клинической практике.
 
Publisher FSBI "SRIGR" RAMS
 
Contributor —
—
 
Date 2016-07-09
 
Type info:eu-repo/semantics/article
info:eu-repo/semantics/publishedVersion
Рецензированная статья
 
Format application/pdf
application/pdf
 
Identifier http://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1529
10.15360/1813-9779-2016-3-41-47
 
Source General Reanimatology; Том 12, № 3 (2016); 41-47
Общая реаниматология; Том 12, № 3 (2016); 41-47
2411-7110
1813-9779
10.15360/1813-9779-2016-3
 
Language rus
eng
 
Relation http://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1529/1021
http://www.reanimatology.com/rmt/article/view/1529/1039
Аврущенко М.Ш., Острова И.В., Волков А.В. Постреанимационные изменения экспрессии глиального нейротрофического фактора (GDNF): взаимосвязь с повреждением клеток Пуркинье мозжечка (экспериментальное исследование). Общая реаниматология. 2014; 10 (5): 59—68. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201455968
Савилов П.Н., Молчанов Д.В. Влияние гипербарической оксигенации на аммиакэкскретирующую функцию почек при резекции печени в эксперименте. Общая реаниматология. 2015; 11 (2): 56—63. http://dx.doi.org/10.15360/18139779201525663
Mahmoudi Rad M., Talebpour Amiri F., Mirhoseini M., Ghasemi M., Mirzaei M., Mosaffa N. Application of allogeneic fibroblast cultured on acellular amniotic membrane for fullthickness wound healing in rats. Wounds. 2016; 28 (1): 14—19. PMID: 26779806
Larsen M., Willems W.F., Pelzer M., Friedrich P.F., Dadsetan M., Bishop A.T. Fibroblast growth factor2 and vascular endothelial growth factor mediated augmentation of angiogenesis and bone formation in vascularized bone allotransplants. Microsurgery. 2014; 34 (4): 301—307. http://dx.doi.org/10.1002/micr.22221. PMID: 24395434
Sindberg G.M., Lindborg B.A., Wang Q., Clarkson C., Graham M., Donahue R., Hering B.J., Verfaillie C.M., BansalPakala P., O’Brien T.D. Comparisons of phenotype and immunomodulatory capacity among rhesus bonemarrowderived mesenchymal stem/stromal cells, multipotent adult progenitor cells, and dermal fibroblasts. J. Med. Primatol. 2014; 43 (4): 231—241. http://dx.doi.org/10.1111/jmp.12122. PMID: 24825538
Larijani B., Ghahari A., Warnock G.L., Aghayan H.R., Goodarzi P., Falahzadeh K., Arjmand B. Human fetal skin fibroblasts: Extremely potent and allogenic candidates for treatment of diabetic wounds. Med. Hypotheses. 2015; 84 (6): 577—579. http://dx.doi.org/10.1016/j.mehy.2015.03.004. PMID: 25784640
Teklemariam T., Zhao L., Hantash B.M. Heterologous expression of mutated HLAG1 reduces alloreactivity of human dermal fibroblasts. Regen. Med. 2014; 9 (6): 775—784. http://dx.doi.org/10.2217/rme.14.58. PMID: 25431913
Арсеньев И.Г., Берченко Д.С., Уразгильдеев Г.Н. Актуальные вопросы клинической и экспериментальной медицины. СПб.; 2007:379—381.
Бобро Л.И. Фибробласты и их значение в тканевых реакциях. Арх. патологии. 1990; 52 (12): 65—68. PMID: 2091587
Гололобов В.Г. Регенерация костной ткани при заживлении огнестрельных переломов. СПб.: Петербург — XXI век; 1997: 160.
Еремеев А.В., Светлаков А.В., Большаков И.H., Власов А.А., Арапова В.А. Функции культивируемых эмбриональных клеток на коллагенхитозановой матрице. Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. 2009; 4 (2): 55—62.
Озерская О.С., Щеголев В.В. Экспериментальные подходы к обоснованию применения клеточных композиций на основе фибробластов в дерматокосметологии. Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. 2008; 3 (2): 66—67.
Швед Ю.Л., Кухарева Л.В., Зорин И.М., Соловьев A.Ю., Блинова М.И., Билибин А.Ю., Пинаев Г.П. Разработка полимерной подложки для культивирования фибробластов кожи человека. Цитология. 2006; 2: 161—168. PMID: 16737184
Кассин В.Ю., Абоянц Р.К., Миронова Л.Л., Конюшко О.И., Николаев М.П., Васильев А.В., Житков И.Л. Экспериментальное изучение реакции соединительной ткани на имплантацию гидрогелей с инкорпорированными фибробластами. Биотехнология. 2004; 6: 71—75.
Расулов М.Ф. Использование мезенхимальных стволовых клеток костного мозга и эмбриональных фибробластов в лечении ожоговых ран. Тихоокеанский мед. журнал. 2004; 1: 7—9.
Sonobe M., Hattori K., Tomita N., Yoshikawa Т., Aoki H., Takakura Y., Suguro T. Stimulatory effects of statins on bone marrowderived mesenchymal stem cells. Study of a new therapeutic agent for fracture. Biomed. Mater. Eng. 2005; 15 (4): 261—267. PMID: 16010034
Lin C., Sun J.S., Hou S.M. External fixation with or without supple mentary intramedullary Kirschner wires in the treatment of distal radial fractures. Can. J. Surg. 2004; 47 (6): 431—437. PMID: 15646442
Mangano C., Bartolucci E.G., Mazzocco C. A new porous hydroxyapatite for promotion of bone regeneration in maxillary sinus augmentation: clinical and histologic study in humans. Int. J. Oral Maxillofac. Implants. 2003; 18 (1): 23—30. PMID: 12608665
Qu S.X., Guo X., Weng J., Cheng J.C.Y., Feng В., Yeung H.Y., Zhang X.D. Evaluation of the expression of collagen type I in porous calcium phosphate ceramics implanted in an extraosseous site. Biomaterials. 2004; 25 (4): 659—667. PMID: 14607504
Уразметова М. Д., Шек А.А. Способ лечения ожогов и ран. Патент Республики Узбекистан №4995. 1998.
 
Rights Authors who publish with this journal agree to the following terms:Authors retain copyright and grant the journal right of first publication, with the work 6 month after publication simultaneously licensed under a Creative Commons Attribution License that allows others to share the work with an acknowledgement of the work's authorship and initial publication in this journal.Authors are able to enter into separate, additional contractual arrangements for the non-exclusive distribution of the journal's published version of the work (e.g., post it to an institutional repository or publish it in a book), with an acknowledgement of its initial publication in this journal.
Авторы, публикующие статьи в данном журнале, соглашаются на следующее:Авторы сохраняют за собой автороские права и предоставляют журналу право первой публикации работы, которая по истечении 6 месяцев после публикации автоматически лицензируется на условиях Creative Commons Attribution License , которая позволяет другим распространять данную работу с обязательным сохранением ссылок на авторов оригинальной работы и оригинальную публикацию в этом журнале.Авторы имеют право размещать их работу в сети Интернет (например в институтском хранилище или персональном сайте) до и во время процесса рассмотрения ее данным журналом, так как это может привести к продуктивному обсуждению и большему количеству ссылок на данную работу (См. The Effect of Open Access).